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產(chǎn)品詳情
操作說明
注意事項
產(chǎn)品簡介
本產(chǎn)品TSA熒光雙重染色試劑盒，適用于石蠟切片免疫熒光雙重染色，尤其適用于相同來源一抗的雙重熒光免疫標記，也可用于不同來源抗體的雙重熒光免疫標記。主要原理是基于酪胺信號放大（TSA，Tyramide signal amplification），以下簡稱TSA技術。TSA技術主要原理是利用酪胺Tyramide的過氧化物酶反應（即熒光標記的酪胺鹽在HRP催化H2O2下形成共價鍵結合位點），產(chǎn)生大量的酶促反應，該產(chǎn)物能與周圍的蛋白殘基（包括色氨酸、組氨酸、酪氨酸殘基）結合，在抗原-抗體結合部位形成大量的熒光素沉積，實現(xiàn)信號放大。還可以通過多次重復免疫標記，使用不同的熒光酪胺實現(xiàn)多重熒光染色。
儲存與運輸
試劑盒內(nèi)各組分按各自所需條件保存，冰袋（wet ice）運輸。6個月有效。
實驗前準備：
1. 自備0.01 mol/L PBS緩沖液（pH7.0-7.4），3% H2O2和0.3% H2O2；
2. 自備一抗及相應HRP標記二抗，抗原修復液（根據(jù)抗體及組織類型選擇合適的抗原修復液）；
3. 根據(jù)用量，按照下表比例配制TSA染色工作液。
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TSA染色工作液 |
試劑名稱 |
體積 |
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TSA-FITC染色工作液 |
Tyramide稀釋液 |
1 mL |
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0.3% H2O2 |
10 μL |
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FITC-Tyramide |
2 μL |
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TSA-CY3染色工作液 |
Tyramide稀釋液 |
1 mL |
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0.3% H2O2 |
10 μL |
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CY3-Tyramide |
2 μL |
注：熒光Tyramide融化后離心機短時離心，干凈吸頭吹吸混勻后取用。TSA染色工作液建議現(xiàn)配現(xiàn)用，需4℃避光保存，24h內(nèi)有效。
操作步驟
以組織切片為例，以下實驗步驟中的實驗用水均為純水：
1. 組織切片脫蠟至水；
2. 抗原修復：根據(jù)所使用的一抗及樣本類型，采用合適方式對組織切片進行抗原修復。PBS清洗3次，每次5 min；
3. 用免疫組化筆對組織畫圈標記；
4. 向組織滴加100 μL組織自發(fā)熒光淬滅劑A液，室溫孵育30 min，水洗5 min；
5. 滅活內(nèi)源性過氧化物酶：向切片上滴加3% H2O2覆蓋組織，室溫避光孵育25 min，阻斷內(nèi)源性過氧化物酶，以減少非特異性背景染色。PBS清洗3次，每次5 min；
6. 封閉：切片水分稍微甩干后，向組織上滴加3%BSA或血清封閉30 min，具體根據(jù)一抗及二抗種屬決定封閉試劑；
7. 一抗孵育：用PBS（或其他抗體稀釋液）將一抗稀釋至適當濃度。輕輕甩掉切片上的液體，滴加稀釋好的一抗覆蓋組織，切片平放于加水的濕盒內(nèi)4℃孵育過夜。PBS清洗3次，每次5 min；
8. 對應HRP二抗孵育：用PBS（或其他抗體稀釋液）將二抗稀釋至適當濃度，向組織上滴加二抗，室溫孵育50 min。PBS清洗3次，每次5 min；
9. 向組織上滴加50-100μL TSA-FITC染色工作液確保完全覆蓋組織，室溫避光孵育10 min。PBS清洗3次，每次5 min；
10. 微波處理：組織切片置于盛滿抗原修復液（根據(jù)組織類型及抗體選擇合適的抗原修復液）的修復盒中進行微波加熱處理，去除已經(jīng)結合的一抗二抗。此步驟中需防止液體過度蒸發(fā)導致的干片。
11. 重復步驟7，進行第二個一抗的孵育：用PBS（或其他抗體稀釋液）將需檢測的第二個抗體（一抗）稀釋至適當濃度。輕輕甩掉切片上的液體，滴加稀釋好的抗體覆蓋組織，切片平放于加水的濕盒內(nèi)4℃孵育過夜。PBS清洗3次，每次5 min；
12. 重復步驟8，進行對應HRP二抗孵育：用PBS（或其他抗體稀釋液）將二抗稀釋至適當濃度，向組織上滴加二抗，室溫孵育50 min。PBS清洗3次，每次5 min；
13. 向組織上滴加50-100μL TSA-CY3染色工作液確保完全覆蓋組織，室溫避光孵育10 min。PBS清洗3次，每次5 min；
14. 細胞核復染DAPI：切片稍甩干后在組織上滴加DAPI（即用型）染色液，避光室溫孵育10 min。PBS清洗3次，每次5min。
15. 組織自發(fā)熒光淬滅：向組織上滴加組織自發(fā)熒光淬滅劑B液，室溫孵育5 min，流水沖洗3 min。
16. 封片及鏡檢：切片稍甩干后滴加抗熒光淬滅封片劑封片。熒光顯微鏡或激光共聚焦顯微鏡觀察并采集圖像。切片置于避光切片盒內(nèi)4℃可保存15天。
注意事項
1. 與熒光二抗相比，TSA試劑盒有更高的靈敏度和更強的信號。因此一抗使用濃度需降低，一般在抗體說明書建議的稀釋比基礎上再擴大5-10倍，以減少非特異性結合導致的背景熒光。建議設置一抗梯度濃度獲得最佳效果。
2. 如背景熒光較強，建議增加組織自發(fā)熒光淬滅步驟。
3. 熒光Tyramide的建議稀釋比是1:500，可根據(jù)實驗結果調(diào)整稀釋比例（調(diào)整范圍1:200 - 1:1000）。
4. 如進行多重熒光標記，建議先孵育多抗，后孵育單抗；先孵育低豐度目的蛋白對應的抗體，再孵育高豐度目的蛋白對應的抗體。
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