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衰老細胞β-半乳糖苷酶染色試劑盒

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產(chǎn)品詳情 操作說明 注意事項

產(chǎn)品簡介

絕大多數(shù)正常細胞的分裂能力是有限的,在不能分裂后就進入衰老狀態(tài),此過程即為細胞衰老(cell senescence),細胞衰老是細胞控制其生長潛能的保障機制,一般含義是復制型衰老(replicative senescence)。正常細胞經(jīng)過有限次數(shù)的分裂后停止分裂,出現(xiàn)不可逆的生長停滯,此時細胞仍然是存活的,但是細胞形態(tài)和生理代謝活性發(fā)生明顯變化,通常表現(xiàn)為細胞體積變大,與衰老相關的β-半乳糖苷酶為活化狀態(tài)。β-半乳糖苷酶是細胞溶酶體內(nèi)的水解酶,通常在pH 4.0時表現(xiàn)活性,但在衰老細胞內(nèi)該酶在pH 6.0條件下表現(xiàn)活性。本試劑盒即是基于此現(xiàn)象及原理,針對衰老相關β-半乳糖苷酶活性水平上調(diào)而對衰老組織或細胞進行染色。具體反應原理就是以X-Gal為底物,衰老細胞特異性β-半乳糖苷酶催化該底物生成藍色產(chǎn)物,表現(xiàn)為細胞胞質有藍色沉積物,可以在光學顯微鏡下進行觀察。按照每個樣品染色液用量為1 mL計算,本試劑盒可完成100個樣品的染色。


儲存與運輸

冰袋(wet ice)運輸;4℃避光保存,有效期12個月。其中X-Gal粉末如果配制成溶液后分裝成小份-20℃保存,3個月內(nèi)有效。



使用方法

l 試劑準備

1. 自備PBS緩沖液。

2. 將100 mg X-Gal粉末用5 mL DMF(二甲基甲酰胺)充分溶解混勻,分裝至1.5 mL潔凈離心管中,每管0.5 mL,-20℃避光保存。避免反復凍融。

3. 按照下表比例配制β-半乳糖苷酶染色工作液。如果是6孔板培養(yǎng)的細胞,每孔需要1.0-1.5 mL染色工作液,如果是12孔板,每孔需要0.5-1.0 mL染色工作液。根據(jù)樣本量配制染色液,避免浪費。

Component

Volume

β-半乳糖苷酶染色液A

940 μL

β-半乳糖苷酶染色液B

10 μL

X-Gal溶液

50 μL

總體積

1 mL

 

l 染色步驟

1. 對于貼壁細胞

(1) 6孔板培養(yǎng)好的細胞(或細胞爬片),吸除細胞培養(yǎng)液,用PBS洗滌2次,加入1 mL β-半乳糖苷酶染色固定液,室溫固定15 min。

(2) 棄去固定液,用PBS洗滌細胞3次,每次2 min。

(3) 用移液器將PBS 吸除干凈,每孔加入1 mL β-半乳糖苷酶染色工作液,置于37℃孵育2 h至過夜。注意:不能在37℃二氧化碳培養(yǎng)箱中孵育。染色期間需及時觀察顯色情況,如果樣本中β-半乳糖苷酶表達量較高,在數(shù)小時內(nèi)即可完成染色。如果β-半乳糖苷酶表達量低,則需適當延長孵育時間,期間需用保鮮膜或parafilm封住6孔板,防止液體蒸發(fā)影響染色結果。

(4) 普通光學顯微鏡下觀察,陽性細胞顯色后,去除染色工作液。如果需要復染細胞核,向孔板內(nèi)加入少量核固紅染液覆蓋細胞室溫染色3 min,去除染色液,用PBS清洗數(shù)次。

(5) 加入2 mL PBS覆蓋細胞,至此染色完成,此樣本可于4℃保存1周?;蛘呒尤?0%甘油覆蓋細胞,4℃可保存較長時間。如果是細胞爬片,則可將爬片充分烤干,二甲苯透明后滴加中性樹膠封片,可長期保存。

2. 對于冰凍切片

(1) 冰凍切片室溫復溫10 min。以組化筆畫圈,將組織圈出。

(2) 向組織上滴加適量β-半乳糖苷酶染色固定液,以完全覆蓋住組織為宜,室溫固定20 min。

(3) 組織切片經(jīng)PBS浸泡洗滌3次,每次5 min。

(4) 將切片置于避光濕盒中,向組織上滴加適量β-半乳糖苷酶染色工作液,需完全覆蓋住組織。濕盒放入37℃孵育,每隔2 h顯微鏡下觀察顯色情況,如果未見顯色,則繼續(xù)孵育,直到組織上衰老細胞顯色。如果樣本需過夜孵育,則需滴加足量的β-半乳糖苷酶染色工作液,防止染液蒸發(fā)干片。

(5) 待組織顯色后,去除染色液,切片入PBS浸洗2次,純水浸洗2次。

(6) (可選)滴加核固紅染液染色3 min,水洗3次。

(7) 切片無水乙醇脫水2次,每次5 min再經(jīng)二甲苯透明5 min,滴加中性樹膠封片。

3. 染色結果

衰老細胞胞質內(nèi)呈散在分布的藍色。


注意事項

1. X-Gal溶液需室溫完全解凍混勻后再使用。

2. β-半乳糖苷酶染色液A和B需提前恢復至室溫后再使用,配制好的染色工作液需充分混勻無沉淀方可使用。

3. 衰老細胞β-半乳糖苷酶染色反應依賴于特定的pH條件,不能在CO2培養(yǎng)箱中進行孵育顯色,否則會影響染色工作液的pH,導致染色失敗。

4. 配制染色工作液時請選擇聚丙烯(PP)或玻璃材質的耗材,不能用聚苯乙烯(PS)材質的耗材。

5. 在顯色2 h-過夜期間需多次觀察顯色情況,時間過短可能導致陰性結果;時間太長則可能導致假陽性。顯色時間與樣本本身所含的β-半乳糖苷酶量多少有密切關系。

6. 在配制染色工作液前,需檢查染色液A的pH值,如果不是6.0(可能因保存條件導致pH發(fā)生改變),需用HCl或NaOH調(diào)節(jié)pH至6.0再使用。

7. 組織切片的β-半乳糖苷酶染色,對于樣本的前期準備要求較高,樣本需-80℃保存,并盡快完成檢測。因為β-半乳糖苷酶非常容易失活,樣本保存不當或時間過久,都可能導致酶失活,則染色時沒有陽性。

8. 操作時請穿實驗服,佩戴一次性手套。

本產(chǎn)品僅供科研用途,不用于臨床診斷!

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