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通用型DNA純化回收試劑盒

價(jià)格: 在線咨詢
貨號:
M0k942131
產(chǎn)品規(guī)格:
100T
購買數(shù)量:
產(chǎn)品詳情 操作說明 注意事項(xiàng)

產(chǎn)品信息

產(chǎn)品名稱

產(chǎn)品編號

規(guī)格

通用型DNA純化回收試劑盒

M0k942131

100T


產(chǎn)品簡介

本試劑盒采用獨(dú)特的吸附柱,既能從TAE或TBE瓊脂糖凝膠中回收DNA片段,又能用于直接純化PCR產(chǎn)物,滿足多種實(shí)驗(yàn)需要。Buffer GL中含有pH指示劑,可根據(jù)顏色來判斷溶膠或PCR產(chǎn)物回收是否達(dá)到最佳狀態(tài)。使用本產(chǎn)品可回收100 bp-10 kb大小的DNA片段,回收率可達(dá)85%。每個(gè)吸附柱每次可吸附的DNA量為20 μg。使用本試劑盒回收的DNA可適用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、測序、文庫篩選、連接和轉(zhuǎn)化等實(shí)驗(yàn)。


儲存與運(yùn)輸

常溫運(yùn)輸;常溫干燥處保存,有效期12個(gè)月。

組成

Component Number

Component

G3631-100T

G3631-1

Buffer BL

50 mL

G3631-2

Buffer GL (Yellow)

60 mL

G3631-3

Buffer PW

2×15 mL

G3631-4

Elution Buffer

15 mL

G3631-5

Bind DNA Mini Columns

100個(gè)

G3631-6

Collection Tubes

100個(gè)

說明書

1份


實(shí)驗(yàn)步驟

一、從瓊脂糖凝膠中回收DNA片段

1. (可選步驟)柱平衡:將吸附柱(Bind DNA Mini Columns)置入收集管(Collection Tubes)中,然后在吸附柱中加入500 μL溶液Buffer BL,10,000 g離心1 min,去除收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中(請使用當(dāng)天處理過的柱子);

2. 用干凈刀片將單一目的DNA條帶從瓊脂糖凝膠中切下(盡量切除多余部分)放入干凈的離心管中,稱取重量;

3. 向膠塊中加入等倍體積溶液Buffer GL(如凝膠重為0.1 g,其體積可視為100 μL,則加入100 μL溶液Buffer GL,60℃水浴至膠塊完全溶解(其間不斷溫和地上下翻轉(zhuǎn)離心管,以確保膠塊充分溶解,若膠塊的體積過大,可事先將膠塊切成碎塊)(注意若是對于回收產(chǎn)量要求高,可在加入Buffer GL完全溶膠后再加入1/2膠塊體積的異丙醇以提高回收率;膠塊完全溶解后最好將溶液溫度降至室溫再上柱,因?yàn)槲街谑覝貢r(shí)結(jié)合DNA的能力較強(qiáng)。凝膠完全融解后應(yīng)呈現(xiàn)淡黃色,即可進(jìn)行后續(xù)操作。如果膠完全融解后溶液的顏色為紫色或紅色,請使用10 μL 3M乙酸鈉(pH 5.0)將溶液的顏色調(diào)為淡黃色后再進(jìn)行后續(xù)操作);

4. 將上一步所得溶液全部轉(zhuǎn)入吸附柱中(吸附柱放入收集管中),10,000 g離心1 min,棄去收集管中廢液,將吸附柱放入收集管中(注意:吸附柱容積為800 μL,若樣品體積大于800 μL可分批加入);

5. 向吸附柱中加入700 μL溶液Buffer PW(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),10,000 g離心1 min,棄去收集管中廢液,將吸附柱放入收集管中(注意:如果回收的DNA是用于鹽敏感的實(shí)驗(yàn),例如平末端連接實(shí)驗(yàn)或直接測序,建議Buffer PW加入后靜置2-5 min再離心);

6. 重復(fù)操作步驟5;

7. 將吸附柱放入收集管中,10,000 g離心2 min,盡量除去殘留液體。將吸附柱置于室溫放置5 min,徹底晾干(注意:漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)酶切、PCR等實(shí)驗(yàn));

8. 將吸附柱放入一個(gè)干凈離心管中,向吸附膜中間位置懸空滴加30~50 μL Elution Buffer或ddH2O(Elution Buffer或ddH2O 60-65℃預(yù)熱效果更好),室溫放置2 min,然后10,000 g離心2 min,收集DNA溶液(注意:洗脫液的體積不應(yīng)少于30 μL,體積過少會影響回收的效率。洗脫液的pH值對于洗脫效率有較大影響。若后續(xù)做測序,需使用ddH2O做洗脫液,并保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi),pH值低于7.0會降低洗脫效率;且DNA產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃,以防DNA降解。為了提高DNA的回收量,可將離心得到的溶液重新加回離心吸附柱中,室溫放置2 min,10,000 g離心2 min,將DNA溶液收集到離心管中)。


二、從PCR反應(yīng)液或酶切反應(yīng)液中回收DNA片段 

1. (可選步驟)柱平衡:將吸附柱(Bind DNA Mini Columns)置入收集管(Collection Tubes)中,然后在吸附柱中加入500 μL溶液Buffer BL,10,000 g離心1 min,去除收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中(請使用當(dāng)天處理過的柱子);

2. 預(yù)估PCR反應(yīng)液或酶切反應(yīng)液的體積,向其中加入3倍體積的溶液Buffer GL(加入Buffer GL不少于150 μL),充分混勻(無需去除石蠟油或礦物油)(注意:若是對于回收產(chǎn)量要求高,可在加入Buffer GL后再加入3/4 PCR反應(yīng)液或酶切反應(yīng)液的體積的異丙醇以提高回收率;混合后溶液應(yīng)呈現(xiàn)淡黃色,即可進(jìn)行后續(xù)操作。如果膠完全融解后溶液的顏色為紫色或紅色,請使用10 μL 3M乙酸鈉(pH 5.0)將溶液的顏色調(diào)為淡黃色后再進(jìn)行后續(xù)操作);

3. 將上一步所得溶液全部轉(zhuǎn)入吸附柱中(吸附柱放入收集管中),10,000 g離心1 min,棄去收集管中廢液,將吸附柱放入收集管中(注意:吸附柱容積為800 μL,若樣品體積大于800 μL可分批加入);

4. 向吸附柱中加入700 μL溶液Buffer PW(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),10,000 g離心1 min,棄去收集管中廢液,將吸附柱放入收集管中(注意:如回收DNA是用于鹽敏感實(shí)驗(yàn),例如平末端連接實(shí)驗(yàn)或直接測序,建議Buffer PW加入后靜置2-5 min再離心);

5. 重復(fù)操作步驟4;

6. 將吸附柱放入收集管中,10,000 g離心2 min,盡量除去殘留液體。將吸附柱置于室溫放置5 min,徹底晾干(注意:漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)酶切、PCR等實(shí)驗(yàn));

7. 將吸附柱放入一個(gè)干凈離心管中,向吸附膜中間位置懸空滴加30~50 μL Elution Buffer或ddH2O(Elution Buffer或ddH2O 60-65℃預(yù)熱效果更好),室溫放置2 min,然后10,000 g離心2 min,收集DNA溶液(注意:洗脫液的體積不應(yīng)少于30 μL,體積過少會影響回收的效率。洗脫液的pH值對于洗脫效率有較大影響。若后續(xù)做測序,需使用ddH2O做洗脫液,并保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi),pH值低于7.0會降低洗脫效率;且DNA產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃,以防DNA降解。為了提高DNA的回收量,可將離心得到的溶液重新加回離心吸附柱中,室溫放置2 min,10,000 g離心2 min,將DNA溶液收集到離心管中)。


注意事項(xiàng)

1. 溶液Buffer BL的加入能夠改善吸附柱的吸附能力并提高吸附柱的均一性和穩(wěn)定性,消除高溫/潮濕或其他不良環(huán)境因素對吸附柱造成的影響,柱平衡步驟也可省略。

2. 使用前請先檢查Buffer PW是否加入指定量的無水乙醇。

3. 各溶液使用后請及時(shí)將蓋子擰緊。


產(chǎn)品僅供科研用途,不用于臨床診斷!


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